بررسی بیماری زایی جدایه هایRhizoctonia solani عامل پوسیدگی طوقه و ریشه کدوئیان در ایران

دو فصلنامه تحقیقات بیماریهای گیاهی

مقاله 3، دوره 1، 3(پاییز)، مهر و آبان 1392، صفحه 27-35   

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

نویسندگان

سیدمهیار میرمجلسی^{* 1}؛ ناصر صفائی²؛ حسین اهری مصطفوی¹؛ سیدباقر محمودی³

¹پژوهشگاه علوم و فنون هسته ای، پژوهشکده تحقیقات کشاورزی، پزشکی و صنعتی، کرج.

²گروه بیماری شناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس.

³موسسه تحقیقات چغندر قند کشور.

تاریخ دریافت: 13 آبان 1392،  تاریخ پذیرش: 13 آبان 1392 

چکیده

یکی از بیماری های مهمی که در سراسر دنیا خسارت زیادی به کدوئیان وارد می سازد، مرگ گیاهچه و پوسیدگی طوقه و ریشه ناشی از Rhizoctonia solani می باشد.در بازدید از مزارع و گلخانه ها در طی فصول زراعی 1385-1384، نمونه های گیاهی مشکوک به آلودگی ریزوکتونیایی از مناطق مختلف استان های تهران، مازندران، خوزستان و اصفهان، از میزبان های خیار، کدو، هندوانه و خربزه جمع آوری، جداسازی و خالص سازی گردید. در این مطالعه 59 جدایه  R. solaniاز خاک، طوقه و ریشه گیاهان مذکور مورد بررسی قرار گرفت قطر ریسه جدایه ها از46/4 تا 86/6 میکرومتر متغیر بود و تمامی جدایه ها، چند هسته ای بودند.  بررسی گروه آناستوموزی جدایه ها نشان داد که 81درصد جدایه ها متعلق به AG 4 می باشند. سایر جدایه ها با هیچ یک از گروه های آناستوموزی استاندارد مورد مطالعه (AG2 و AG7 ) آناستوموز ندادند. نتایج حاصل از آزمون بیماری  زایی نشان داد که نهایتا از مجموع 59 جدایه بدست آمده، 97 درصد جدایه ها بیماری زا بودند، که این جدایه ها بر اساس درصد بیماری زایی در10  گروه مجزا قرار گرفتند. در این آزمایش دو جدایه کدو و خیار جدا شده از استان اصفهان، ازآنجائیکه متعلق به گروه آناستوموزی چهار بودند و هیچ گونه علائمی را بر روی طوقه یا ریشه میزبان های خودشان ایجاد نکردند، این احتمال می رود که جزو جدایه های غیربیماری زا باشند. در این مطالعه گروه آناسنوموزی چهار، برای اولین بار درایران از روی میزبان کدو گزارش گردید.

کلیدواژه‌ها

پوسیدگی طوقه و ریشه؛ آزمون بیماری زایی؛ کدوئیان؛ Rhizoctonia solani؛ AG4

عنوان مقاله [English]

Pathogenicity of Rhizoctonia solani, the causal agent of crown and root rot of cucurbits in Iran

نویسندگان [English]

S.M. Mirmajlessi¹؛ Naser Safaie²؛ H.A. Mostafavi¹؛ S.B. Mahmoudi³

چکیده [English]

The cucurbit damping off, root and crown rot caused by Rhizoctonia solani Kuhn are the most important diseases of these crops. In a survey of fields and greenhouses during 1384-1385 samples of cucumber, pumpkin, watermelon and melon, suspected of being infected by Rhizoctonia in Tehran, Mazandaran, Khouzestan and Isfahan provinces were collected and the fungus was isolated. In this study, 59 isolates of R. solani were recovered from soil, crown and roots of cucumber, pumpkin, watermelon and melon. Hyphae width ranged from 4.46 to 6.86 μm, and all of them were multinucleate. Anastomosis grouping showed that 81% of samples belonged to AG4 and the rest of isolates did not anastomose with either of the standards AG2 and AG7. The results of pathogenicity test showed that of the 59 recovered isolates, 97% were pathogenic, which in turn were classified in 10 separate categories based on their virulence. In this investigation two isolates of pumpkin and cucumber belonging to AG4 from Isfahan province appeared to be non pathogenic. This is considered to be the first report of AG4 on pumpkin in Iran.

کلیدواژه‌ها [English]

AG4, Crown and root rot, Cucurbits, Pathogenicity test, Rhizoctonia solani

مراجع

1. Ad Anderson N.A.1982. The genetics and pathology of Rhizoctonia solani. Annual Review of Phytopathology 20: 329-374.
2. Ashkan M., Abusaidi D. and Hamdollah-zadeh A. 1995. Pre and post emergence damping-off of pistachio caused by Rhizoctonia solani. Proc. 12^th Plant Protection Congress, Karaj, Iran.
3. Burpee L.L., Sanders P.L., Cole H.Jr. and Sherwood R.T.1980. Anastomosis groups among isolates of Ceratobasidium cornigerum and related fungi. Mycologia 72: 689-701.
4. Carling D.E. and Sumner D.R. 1992. Rhizoctonia spp. pp. 157-165, in: Methods for Research on Soilborn Phytopathogenic Fungi. By Singleton, L. L., Mihail, j. d., and Rush, C. M. (Editors).
5. Carling, D.E., Kuninaga S. and Brainard K.A.2002. Hyphal anastomosis reaction, DNA-internal transcribed spacer sequences, and virulence levels among subsets of Rhizoctonia solani anastomosis group-2 (AG-2) and AG-BI. Phytopathology 92: 43-50.
6. Cubeta M.A. and Vilgalys R. 1997. Population biology of the Rhizoctonia solani complex. Phtopathology 87: 480-484.
7. Hamdollah-zadeh A. and Rahimian H. 1989. Anastomosis group 4 is the major cause of Rhizoctonia solani of cotton and soybean in Gorgan. Proc. 9^th Plant Protection Congress, Mashhad, Iran.
8. Kroland W.C. and StanghelliniM.E.1988. Clean slide technique for the observation of anastomosis and nuclear condition of Rhizoctonia solani. Phytopathology 78: 820-822. 
9. Martin S.B. and Lucas L.T. 1984. Characterization and Pathogenicity of Rhizoctonia spp. And binucleate Rhizoctonia like fungi from turfgrasses in north Carolina. Phytopathology 74: 170-175.
10. Mathew K.A. and Gupta S.K. 1996. Studies on web blight of French bean caused by Rhizoctonia solani and its management. Indian Journal Mycological. Plant Pathology. 26: 171–177.
11. Ogoshi A. 1987. Ecology and pathogenicity of anastomosis and intraspecific groups of Rhizoctonia solani Kuhn. Annual Review of Phytopathology 25: 125-143.
12. Ogoshi A. 1996. The genus Rhizoctonia. pp. 1- 9. In: RhizoctoniaSpecies: Taxonomy, Molecular Biology,Ecology, Pathology and Disease Control. By Sneh, B., Jabaji-Hare, S., Neate, S., and Dijist, G.  (Editors).
13. Parmeter J.R.Jr., Sherwood R.T. and Platt W.D. 1969. Anastomosis grouping among isolates of Thanatephorus cucumeris. Phytopathology 59: 1270-1278.
14. Rahimian H. 1986. Rhizoctonia soil rot of tomato. Proc. 8^th Plant Protection Congress, Esfahan, Iran.
15. Safaei N., Minassian V., Rahimian H. and Banihashemi Z. 1996. Isolation identification and pathogenicity of Rhizoctonia fungi isolated from several. Host plants in the Khuzestan province. Iranian Journal of Plant Pathology 35: 1-8.
16. Sneh B., Burpee L. and Ogoshi A. 1991. Identification of Rhizoctonia Species. APS Press. 133p.
17. Vilgalys R. and Gonzalez D. 1990. Ribosomal DNA restriction fragment length polymorphisms in Rhizoctonia solani. Phytopathology 78: 698-702.
18. Windels S.C.E. and Nabben D.J. 1989. Characterization and pathogenicity of anastomosis groups of Rhizoctonia solani isolated from Beta vulgaris. Phytopathology 79: 83-88.
19. Zamani M.R., Balali Gh., Danesh D. and Rahimian H. 1989. Anastomosis groups of Rhizoctonia solani isolated from several hosts in Isfahan. Proc. 4^th Plant Protection Congress, Mashhad, Iran.